DNA胶回收回收率如何提高的一点感悟

栏目:科技资讯  时间:2023-07-31
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  跑胶+胶回收是一种DNA纯化方法,本人好奇限制其得率的因素是什么?比如我酶切-跑胶-胶回收,酶切后(假设100%)计算还有6000ng,胶回收洗脱量总计就600ng。不知道损失因素在哪里?

  想必来查这条消息的人都遇到过胶回收回收率不高的问题吧,这里我分享一点自己在实验中的感悟,之前我的胶回收回收率常不足百分之一(┭┮﹏┭┮),在经过我自己查资料(知乎、豆瓣、CNKI、以及各大公司说明书),询问师兄师姐和自己实验得出了一些能够提高胶回收回收率的办法,希望对大家有用~

  1.溶胶之后可以在室温下静置3分钟(或适当调节)后再离心过柱子;这一条的理论依据来源于我们试剂盒的名称“DNA胶回收吸附柱”,有多少小伙伴跟我一样最开始把这东西当滤膜啦,这玩意的原理是特异性吸附,要给他时间吸附结合DNA才行哇,不然DNA都在下面的收集管了(可以去测收集管的A260吸光值验证),基于这个原理,可以初期结合时间短一点,后期结合时间长一点。另外,关于要不要冷吸附和热洗脱,这个东西没有定论,在豆瓣上有说可以的,但是我在碧云天试剂盒的说明书上看到了“不可冷吸附”的标注,因此“冷吸附热洗脱”不作为一个通用的办法。(说明书我随后截图补发)

  2.洗脱的时候适当增加洗脱液(ddH2O)的用量(单次20微升),目的是保证液体全覆盖整个膜面,把吸附的DNA都洗脱下来;我最开始为了提高浓度甚至把ddH2O的用量降低到每次10微升,然后也不把这个吸上来就再加10微升洗脱,这样同样为20微升,但是我每一次都没有把膜面覆盖全,相当于我的DNA都在膜面上了。为了提高回收率,可以把收集管中的20微升吸上来再洗脱一遍(注意,不是20微升分为两个10微洗两遍,是20微升洗一遍吸上来再洗一遍,因为原理是吸附与溶解而不是过滤,不用担心再滤一遍有损失)。

  3.这一条虽然不能提高回收率,但是可以提高洗脱后浓度,达到下一步实验的要求。可以“大力出奇迹”扩大基数,比如多酶切几管,把几管回收到一个吸附柱里(不用担心饱和,因为吸附柱的承载一般都是微克级别的,而我们测的浓度是纳克每微升级别的,乘以体积不会超过总承载量,承载量一般说明书上都会有),这样DNA总量上去了,纵使洗脱率低,也能有不错的浓度,当然,这一条不如前两条在原理上解决问题,但是确实很暴力,很好用(呜呜呜,因为多切了几管载体就被师姐骂了)。同理,可以将几管菌液离心到一管里,使得提取的质粒浓度较高(比方说2000纳克每微升的质粒胶回收纵使百分之一点多也有20~30纳克每微升,足够T4连接和同源重组了,2000纳克每微升亲测可以酶切开),从而再低的回收率也能有还行的浓度。

  最后,如果大家有其他的方法或原理上的理解欢迎在评论区补充哦~

  当然还是要推荐大家多查,多交流,遇见个愿意教你师兄师姐还好,遇见个不愿意教你的师兄师姐就只能自力更生了(呜呜~)

  如果使用了和聚合酶一致的条件,从你可以获得单一目的条带来看,扩增条件再优化对目的条带的浓度影响应该不大,可以适当增加循环数来提高目的条带浓度,这是最笨又最简单的方法。另外pcr模板还是不要稀释了,应该很容易得到的,你要是30微升用完了还搞不定那就肯定有问题了。最后, 我偷偷告诉楼主,日常实验中,经常回收后压根就看不到目的条带,但是照样可以进行转化而且拿到了正确克隆,所以对于你这样还可以看到目的条带的(不知道回收完是不是还要进行酶切,如果需要,建议不要回收,直接pcr产物酶切,然后再回收,避免多次回收损失),我建议可以继续进行克隆,只是连接体系适当加大,比如20微升,目的是让你可以尽量多的加入目的条带,这样挑到几个转化子还是可以的,祝好!

  DNA有关胶回收效率的方法:

  DNA回收纯度取决于纯化介质对DNA吸附的特异性、洗涤杂质是否彻底。而DNA回收率和浓度则与elution buffer的体积,以及buffer在柱子上停留 的时间有关。较大的洗脱体积可以提高回收率,充分洗脱,但是会造成产物浓度太低不好用。比如100-200ul的洗脱液可以彻底洗脱纯化柱吸附的DNA, 不过考虑到后继实验的方便,建议使用50ul的洗涤液,正对加入膜中央(避免加在管壁上而不能充分接触纯化介质),可以完全浸润回收柱上 的纯化膜。最低建议采用30ul洗脱液,但是可能会降低回收率。有人试过用15—25ul洗脱2次,觉得这样第一次浓度高第二次比较充分,其实没有必要, 只要适当延长在柱上停留的时间,就有助于提高得率。  其他的技巧也比较传统的的,比如切胶的时候要尽量减少切 胶体积(不超过400mg),由于Qiaquick柱子的载量达到10ug,如果胶块实在太大而预期DNA总量不超过10ug,可以用大一点的管溶解,分 几次上柱离心吸附后再洗涤。注意的是紫外照射时间不要太长,因为紫外线对DNA(特别是对于较大的片段)有影响。还有就是溶胶要彻底,用枪头把胶块弄碎一 点有助于50度下快速溶解。溶解完全后溶液的颜色指示溶液的pH值,如果变色需要调pH值以防止实验失败。需要用ddH2O或者TE洗脱的,注意pH在 7.0—8.5之间的回收率最高。回收率和片断大小、多少有关,较大的片断(7kb以上)回收率会有所降低,洗脱液预热到50度再加入纯化柱膜中央,有助于提高产率。

  1 提高胶回收量的技巧

  1) 增加电泳时的上样量。

  2) 电泳缓冲液用新鲜配制的。

  3) 切胶时尽量只切有条带的胶,减小切胶体积:含目的片断很少的胶就不要要了,不然影响回收率。

  4) 把切的两块或多块胶融化后,无论多大的体积都用一个管子,转移到同一个柱子上。

  5) 溶胶时所加的溶液可多一点,这样更有利于DNA与膜的结合,不过一般不要多余750ul。

  6) 胶回收的关键是通过柱子的溶液的盐浓度、酸碱性(电荷)和疏水性使DNA与柱子结合。

  因此,若电泳缓冲液的PH偏高,可在溶胶液中加入10ul(PH 5.0,3mol/L的 NaAC);为了使DNA分子更好的拦截在膜上,可以添加30%异丙醇在加热溶解胶后的液体里。

  7) 加洗脱液之前,将柱子在室温放置几分钟(大约需10分钟),以使乙醇充分挥发。

  8) 最后少加些洗脱液,尽量减少回收体积,一般用30-50μl洗脱液洗脱(不能太少,否则无法浸湿膜反而不利于洗脱);洗脱液滴在膜中央,以充分洗脱结合在膜上的DNA。

  9) 可以在加入洗脱液之后,可以在55度水浴5分钟或放在50度水浴10分钟以上再洗脱,或用封口膜密封4度过夜,第二天再离心回收,效果不错。

  10) 将离心后的洗脱液加回吸附柱,再次离心。

  2 PCR 产物回收的详细方法和步骤

  1) 普通胶回收

  如果要胶回收,最好还是用试剂盒,方便,回收率也略高,实在要手工回收,可以切胶后加入3倍体积TE,水浴熔化后,酚、酚/氯仿抽提干净,乙醇沉淀即可。

  2) 从低熔点凝胶回收DNA

  纯化DNA片段 加与凝胶体积相等的TE(10mmol/l Tris-HCl pH8.0,0.1mmol/l EDTA ),置65℃水浴5分钟保温,使凝胶完全溶解。

  待放至室温,加等量酚(TE饱和,TE封在上层,取下层酚),轻轻混匀(不用混匀),12000rpm,3分钟离心。反复1-2次。

  取上层液,加0.1体积3mol/L醋酸钠(pH5.2)和2.5倍体积无水乙醇,进行乙醇沉淀。将纯化的DNA加适量TE溶解,测定含量,备用(可用于目的基因结构分析,探针制备等)。

  3) 扩增特异性好的PCR回收

  如果PCR扩增特异性好,只是简单的PCR产物纯化回收,可以在PCR产物中加入50ug/ml 的蛋白酶K,37度1h,酚/氯仿抽提一次,氯仿抽提一次,上清加入0.1体积的醋酸钠,2.5体积的无水乙醇沉淀回收。

  本篇文章,未成年人请在家长陪同下观看

  FBI Warning1849年,一家名不见经传的公司出现了。这家公司在业内名声不显、能力平平,主攻的心绞痛却是当时的“不治之症”。谁也不会知道,就是这样一家公司,歪打正着的发明了人类历史上首款正儿八经的“壮阳药”。

  壮阳药的历史渊源非常久远,看来古人也对这方面忌不自信。西汉时期的《神农本草经》中记载了许多药方,譬如:淫羊藿。(光看这个名字就很不正经),到了《本草纲目》里面那简直是满汉全席,分类更为详细和全面……(嗯,专业)

  图片来自百度前些天上网冲浪,无意间瞥到一篇文章

  微基因WeGene:把木乃伊磨粉内服外用,欧洲人太野了吧!文章截图好家伙,吃这玩意儿能硬起来的当真是猛士,西方人果真有“冒险精神”

  但是这些都是虚头巴脑的东西,木乃伊粉就算了,纯粹的以讹传讹,中药勉勉强强说得过去,不知全貌不做评论。也就是说,在伟哥还没研制出来之前,世界上真的一个能打的都没有……

  当然,伟哥的初心也不是这种奇奇怪怪的方向……

  上个世纪九十年代,心绞痛还是不治之症,世界上很多公司都在紧锣密鼓的研制主治药物,我们今天的主角——辉瑞公司也在其中。当时治疗心绞痛的主要方向是通过药物使血管壁平滑肌舒张,血管扩张,减轻心脏压力,缓解疼痛。

  n年前的图,拿出来鞭尸图片来自作者生物竞赛老师PPT截图,当时讲到这一段全班哄笑,充满了快活的气息可惜的是,辉瑞公司的药物对缓解心脏压力的效果十分不理想。

  但正当公司想要砍掉这个项目并研发别的赚钱的项目时,派下去回收药丸的工作人员一脸懵逼的报告:“老板,男病人们都不愿意交还药丸,甚至……甚至我们还有了几笔订单……问他们为啥他们也不说……”(本对话为作者虚构,请勿当作确切史实)

  唉,等等……男人……难言之隐……血管平滑肌舒张……充血……

  (未曾设想的道路)

  本着“赚钱嘛,不寒碜”的心态,辉瑞公司大笔一挥,定向改良伟哥后迅速投放市场,成为了直到今天都风靡全球的一款药物。

  传入中国后,那些王伟、张伟、李伟等一系列“伟哥”都被迫改了外号,成为了“王哥”、“张哥”、“李哥”。

  伟哥的名字也废了设计部不少脑细胞,他是Viagra的音译,而Viagra的来源是“精力(vigor)”与“尼亚加拉(Niagara,美国的一个瀑布)”的结合……有画面了!

  尼亚加拉大瀑布,很美,很汹涌……科学史上从来都不乏巧合,从阿基米德的澡盆[1],到牛顿脑袋上的苹果[2];从救死扶伤的加特林[3],到爱因斯坦的原子弹[4];从隐藏在锈迹中的青霉素[5],到装逼打脸的泊松亮斑[6]……这些巧合或造福人类,或引发战争;或推动科技,或阻碍发展;或善,或恶。但唯一肯定的是,这就是文明,属于人类的文明。

  (本文为作者原创,图片来自材料与课堂,引用 @微基因WeGene 的文章片段,存在部分想象与虚构,存在艺术加工,目的是把故事讲的更有趣些)

  DNA凝胶回收是从电泳后的凝胶中回收目的DNA的过程,其目的是将目标DNA重新利用,也是我们在进行生物领域实验中最常用的实验方法之一。

  DNA凝胶回收实验现在基本上都是采用试剂盒的方式来进行操作,而试剂盒一般是采用吸附材料结合的方法去除杂质和纯化DNA片段。目前大多数生物公司都采用硅基质吸附材料,可以特异性吸附核酸DNA,有效去除体系中的蛋白、盐类和有机物质,最后在洗脱液条件下被洗脱,从而达到核酸纯化回收的目的。

  

  3.回收后的片段无法用于后续实验,如连接等

  1)洗脱产物含有残留的乙醇。洗脱时硅胶膜或硅胶树脂上有漂洗缓冲液残留,会使洗脱产物中含有乙醇,影响下游操作。请确保彻底去除漂洗缓冲液,在洗脱前可通过再次离心或置于50℃烤箱中5-10分钟;

  2)洗出液中污染有琼脂糖。凝胶未全部溶解;

  3)洗脱产物含有ssDNA,表现为在琼

  脂糖电泳上呈小弥散带。将洗脱产物95℃加热2 min,慢慢冷却到室温,使单链DNA重新退火复性即可。

  4.洗脱注意事项

  1)洗脱体积越大,洗脱得率越高。若需得到较高浓度的DNA,可以适当减少洗脱体积,但最小体积应不少于25 μL,体积过小会降低DNA洗脱得率, 降低产量。

  2)电泳图及切胶块的实例图

  

  3)回收产物

  

  

  想必来查这条消息的人都遇到过胶回收回收率不高的问题吧,这里我分享一点自己在实验中的感悟,之前我的胶回收回收率常不足百分之一(┭┮﹏┭┮),在经过我自己查资料(知乎、豆瓣、CNKI、以及各大公司说明书),询问师兄师姐和自己实验得出了一些能够提高胶回收回收率的办法,希望对大家有用~

  1.溶胶之后可以在室温下静置3分钟(或适当调节)后再离心过柱子;这一条的理论依据来源于我们试剂盒的名称“DNA胶回收吸附柱”,有多少小伙伴跟我一样最开始把这东西当滤膜啦,这玩意的原理是特异性吸附,要给他时间吸附结合DNA才行哇,不然DNA都在下面的收集管了(可以去测收集管的A260吸光值验证),基于这个原理,可以初期结合时间短一点,后期结合时间长一点。另外,关于要不要冷吸附和热洗脱,这个东西没有定论,在豆瓣上有说可以的,但是我在碧云天试剂盒的说明书上看到了“不可冷吸附”的标注,因此“冷吸附热洗脱”不作为一个通用的办法。(说明书我随后截图补发)

  2.洗脱的时候适当增加洗脱液(ddH2O)的用量(单次20微升),目的是保证液体全覆盖整个膜面,把吸附的DNA都洗脱下来;我最开始为了提高浓度甚至把ddH2O的用量降低到每次10微升,然后也不把这个吸上来就再加10微升洗脱,这样同样为20微升,但是我每一次都没有把膜面覆盖全,相当于我的DNA都在膜面上了。为了提高回收率,可以把收集管中的20微升吸上来再洗脱一遍(注意,不是20微升分为两个10微洗两遍,是20微升洗一遍吸上来再洗一遍,因为原理是吸附与溶解而不是过滤,不用担心再滤一遍有损失)。

  3.这一条虽然不能提高回收率,但是可以提高洗脱后浓度,达到下一步实验的要求。可以“大力出奇迹”扩大基数,比如多酶切几管,把几管回收到一个吸附柱里(不用担心饱和,因为吸附柱的承载一般都是微克级别的,而我们测的浓度是纳克每微升级别的,乘以体积不会超过总承载量,承载量一般说明书上都会有),这样DNA总量上去了,纵使洗脱率低,也能有不错的浓度,当然,这一条不如前两条在原理上解决问题,但是确实很暴力,很好用(呜呜呜,因为多切了几管载体就被师姐骂了)。同理,可以将几管菌液离心到一管里,使得提取的质粒浓度较高(比方说2000纳克每微升的质粒胶回收纵使百分之一点多也有20~30纳克每微升,足够T4连接和同源重组了,2000纳克每微升亲测可以酶切开),从而再低的回收率也能有还行的浓度。

  最后,如果大家有其他的方法或原理上的理解欢迎在评论区补充哦~

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